Отчёт по теме"Определение влияния Эм пластмассы на динамику прироста бактерий кишечной группы и доказательство путём гемосканирования безвредности или полезности воды из ЭМ пластиковых ёмкостей"

Московский государственный университет технологий и управления

Факультет «Технологического менеджмента»

Кафедра «Биоэкологи и ихтиологии»

                                                                                                       Утверждаю:

Декан факультета ТМ,

профессорТ.В Шленская

2008 г.

 отчет

 По теме «Определение влияния ЭМ-пластмассы на динамику прироста бактерий кишечной группы и доказательство путем гемосканирования безвредности или полезности для людей воды из ЭМ-пластиковых емкостей»

                                                                                            Научный руководитель:

д.б.н., профессор

Ю.Г.Симаков

Москва. 2008

Список исполнителей темы и отчета

 1. Симаков Юрий Георгиевич, доктор биологических наук, профессор, руководитель темы

 2. Бычкова Лариса Ивановна. кандидат биологических наук, доцент.

 3. Бурыкина Елена Анатольевна, кандидат биологичемких наук, доцент.

 4. Горшкова Людмила Михайловна, зав. лабораторией микробиологии.

Оглавление

 1. Определение влияния ЭМ-пластмассы на общее число микроорганизмов в воде и на динамику

прироста бактерий кишечной группы......................

1.1. Определение общего числа бактерий и динамика ..................

численности бактерий в воде из емкостей ЭМ пластмассы

1.1.1. Методика.....................................................................

1.2. Влияние емкостей из ЭМ-пластмассы на динамику прироста гетеротрофных бактерий..........................................................

1.3. Определение влияния ЭМ-пластмассы на динамику прироста бактерий кишечной группы............................................................

1.3.1. Материал для проведения испытаний...............................

1.3.2. Микробиологические методы ..........................................

1.4. Результаты исследований...................................................

1.5. Заключение. ....................................................................

2. Доказательство путем гемосканирования безвредности или полезности для людей воды из ЭМ-пластиковых емкостей................................................

2.1. Задачи исследования и методика проведения экспериментов....

2.2. Результаты исследований.................................................

2.3.Заключение.....................................................................

Литература..................................................................................

 1. Определение влияния ЭМ-пластмассы на общее число микроорганизмов в воде и на динамику прироста бактерий кишечной группы

 1.1. Определение общего числа бактерий и динамика численности бактерий в воде из емкостей ЭМ пластмассы 

1.1.1. Методика

       Исследование проведено в 3-х емкостях из ЭМ пластмассы и в №- полиэтиленовых сосудах, служивших в качестве контроля. В каждый из сосудов помещалось по 1 литру прудовой воды.

Для исследования динамики прироста гетеротрофных бактерий в емкостях из ЭМ-пластмассы и в контрольных пластиковых емкостей, использовали воду, взятую из одного из Подмосковных прудов. Определение общего количества бактерий в различных вариантах опыта проводилось по ГОСТ 5216-50. Для этих целей определялось количество бактерий в 1 мл воды, способных расти на мясо-пептонном агаре. Подсчет колоний в чашках Петри проводили через каждые 24 часа после посева. К одному мл исследуемой воды добавляли 9 мл физиологического раствора, а затем из каждой пробирки переносили 1,0 мл жидкости для получения соответствующего разведения.

Мясо-пептонный агар расплавляли в водяной бане, а затем охлаждали до 40⁰С. После этого стерильной пробиркой отбиралась соответствующая проба и вносилась в 2 стерильные чашки Петри, затем следовала заливка мясо-пептонным агаром при перемешивании исследуемой воды вращательным движением. После остывания чашки Петри помещались вверх дном в термостат на 24 часа. Через 24 часа производили подсчет колоний на поверхности и в глубине агара.

                         1.2. Влияние емкостей из ЭМ-пластмассы на динамику прироста гетеротрофных  бактерий

       Динамику изменения численности гетеротрофных бактерий  изучали в прудовой воде, которую наливали либо в емкости их ЭМ пластмассы, либо в контрольные сосуды. Общее количество сапрофитных бактерий определялось согласно описанной ранее методике (1). Продолжительность опыта составляла 7 суток. Данные о влиянии емкостей из ЭМ-пластмассы на прирост гетеротрофных бактерий представлены в табл. 1.

 Таблица 1

Изменение количества микроорганизмов в 1мл прудовой воды в емкостях из ЭМ-пластмассы и в контрольных сосудах

Жирный шрифт - достоверная разница средних (Р≤ 0,05; t_st=2,45; со второго по 7 день опыта соответственно t_d=2,64; 2,85; 2,91; 3.01; 2,57).Анализ результатов показывает, что изменение количества гетеротрофных бактерий в толще воды ЭМ-пластиковых емкостей, отличается от контроля примерно в два раза. Падение численности гетеротрофных бактерий в опытных емкостях отмечается на вторые сутки после постановки опыта и продолжается до конца испытаний.

Исходя из вышеизложенного, можно заключить, что все ЭМ-пластмассовые емкости оказывают воздействие на динамику численности сапрофитных бактерий - численность бактерий достоверно изменяется по сравнению с контролем. Однако подавление прироста бактерий нельзя считать значительным, так как в 1 мл воды, даже после 7 дней экспозиции, содержатся еще десятки тысяч гетеротрофных бактерий. Таким образом, мы наблюдаем подавление роста бактерий, но не бактерицидное действие ЭМ пластмассовых емкостей.

 1.3. Определение влияния ЭМ-пластмассы на динамику прироста бактерий кишечной группы

         Для испытания эффективности ЭМ пластмассовых емкостей объемом 1,5 литра на динамику прироста трех видов бактерий кишечной группы было взято 3 пластмассовых изделия типа «Кашпо» с маркой ЭМ, и такое же количество емкостей из полиэтилена в качестве контроля. Для определения динамики прироста каждого вида бактерий использовался счет колоний бактерий, посеянных на МПА, сразу посева, через 24 часа, 48 часов и 96 часов. Различная морфология колоний позволяет дифференцировать бактерии по видам при посеве в одну чашку Петри. Таким образом, опыт проведен в 3-кратной повторности. Данный опыт позволяет ответить на вопрос, как действует емкость для воды из ЭМ пластмассы на отдельные виды бактерий кишечной группы, находящиеся в смеси и моделирующие условия в воде природных водоемов.

 1.3.1. Материал для проведения испытаний

 Тест-объекты. Испытание проводилось на смеси бактерий кишечной палочки, стрептококков и  штамма сальмонеллы ТА -98.

1. Кишечная палочка (Escherichia coli) взята из коллекции микроорганизмов лаборатории МГУ ТУ. Для приготовления смеси бактерий в воде кишечные полочки высевались в чашки Петри на среду МПА. И перед посевом на косой агар на специфичную среду Эндо (4), для точного установления принадлежности данной бактерии к кишечной полочке.

2. Для приготовления смеси бактерий использовали также культуру сальмонеллы (Salmonella typhimurium, штамм ТА-98). Культура приобретена для проведения испытаний в институте Генетики микроорганизмов. Для выделения бактерий использовали посевы на среду МПА с последующим переводом на косой агар.

3. Для испытания действия ЭМ-пластмассы на размножение бактерий были использованы также мелкие кокки (Streptococcus faecalis). Они обитатели кишечника человека, но выделяются также из крови при подострых эндокардитах. Это мелкие кокки, располагающиеся цепочками, размер которых составляет. 0,5 - 1 мкм. Колонии кокков также выделялись из посевов в чашках Петри и пересевались затем на косой агар для наращивания бактериальной массы.

Таким образом, испытывалось действие ЭМ-пластмассовых емкостей на прирост бактерий в воде не в чистых культурах, а в смеси, что более соответствует природным условиям в воде, когда различные виды бактерий влияют друг на друга.

 1.3.2. Микробиологические методы

 Бактериальные исследования. Исследование активности ЭМ-пластиковых емкостей на динамику роста бактерий (сальмонелла, стрептококки и кишечная палочка) проводили с использованием объема отстойной водопроводной воды 1 литр. Смесь готовили одновременно для опыта и для контроля в одной емкости. В бутыль, емкостью 6 литров, с отстойной водопроводной водой, добавляли суспензию кишечной палочки, стрептококков и сальмонелл. О концентрации бактерий судили по калиброванному для определения численности бактерий стандарту мутности и подбирали так, чтобы число кишечных палочек примерно составило примерно 1,0 Х 10⁴ кл/мл, а число сальмонелл 1,0 Х 10³ кл/мл. Для исследований был взят не вирулентный штамм ТА-98 (5). Стрептококки фекалис добавлялись в концентрации на порядок выше, чем кишечная палочка. Далее смесь бактерий разливалось по емкостям (по 1 литру в каждую емкость). В обшей сложности в этом опыте мы взяли 3 емкости ЭМ и три контрольные емкости из полиэтилена.

Посев на МПА по 1мл осуществляли в 6 чашек Петри (без разведения и с разведением 10 и 100 раз) из каждой опытной и контрольной емкости. Таким образом, посев на МПА и последующий подсчет колоний проводился в 18 чашках Петри для каждого срока взятия проб. Пробы из емкостей брались 4 раза (сразу после постановки опыта, 24 часа, 48 часов и 96 часов) Чашки Петри помещались на двое суток в термостат (36⁰С). Затем производили подсчет выросших колоний в контроле и в опыте. Все колонии можно была идентифицировать: кишечные палочки выявлялись после посева на среду Эндо и по наличию сероватого оттенка у колоний, сальмонелла имеет более светлые колонии, Streptococcus faecalis образует мелкие колонии, которые по размерам и морфологии четко отличаются от колоний первых двух бактерий и растут по всей толщи агара.

 1.4. Результаты исследований

 Бактерии. Результаты исследования, проведенные на воде, содержащей смесь бактерий, приведены в таблице 2.

Таблица 2

Среднее число бактерий в воде, экспериментально загрязненной микроорганизмами при экспозиции в ЭМ пластиковых емкостях (кл/мл).Среднее содержание бактерий в контроле и опыте каждого вида (кл/мл) сразу после постановки эксперимента:

Escherichia coli - 3,0 х 10⁴

Salmonella typhimurium - 2,2 х 10³

Streptococcus faecalis - 1,4 х 10⁵

(Р≤ 0,05; t_st=2,45;  для эшерихии t_d=2,64 и 2,58; для сальмонеллы t_d=2,73 и 2,93; для стрептококков t_d=2,68 и 2,71).

Жирным шрифтом выделены результаты, где отмечается статистически достоверный эффект воздействия фильтров на бактерий.

 Анализ полученных результатов показывает, что под влиянием сосуда из ЭМ- пластмассы динамика прироста бактерий кишечной группы отличается от контроля.

Кишечная палочка (Escherichia coli). Прирост бактерий в контроле испытывает колебательный процесс. Через 48 часов количество бактерий возрастает более чем в два раза и к 96 часу несколько снижается. В то время как в опыте через сутки количество бактерий несколько возрастает и далее испытывает незначительные колебания. Создается впечатление, что ЭМ-пластиковые емкости выступают как стабилизатор прироста бактерий в воде, но бактерицидные свойства, как и при исследовании действия на гетеротрофные бактерии, не проявляются.

Сальмонелла (Salmonella typhimurium). шамм 98. Динамика прироста сальмонеллы в контроле сходна с приростом кишечной палочки. Наибольший подъем прироста наблюдается через 48 часов. Через 96 часов показатели в контроле и опыте близки и разница между ними статистически недостоверна (Платонов, 2001). Как и в случае с кишечной палочкой прирост сальмонеллы в ЭМ- пластмассовых емкостях стабилизируется. В этом основное отличие динамики прироста в пластиковых ЭМ-емкостях от прироста в обычных пластиковых сосудах. Видимо, бактерицидным свойством ЭМ-пластмассовая емкость не обладает.

Стрептококк (Streptococcus faecalis). Не смотря на повышенное содержание в смеси бактерий стрептококков по сравнению с кишечной палочкой и сальмонеллой, динамика прироста оказалась сходной в этой кишечной группе микроорганизмов. Как и в опытах с другими видами бактерий отмечается стабилизация прироста, и снимаются колебательные процессы изменения численности бактерий в воде, находящейся в ЭМ-пластмассовых емкостях.

 1.5. Заключение.

      Проведенный анализ результатов воздействия ЭМ - пластмассовых емкостей на динамику изменения микроорганизмов в прудовой воде и в искусственно приготовленной среде с калиброванным количеством трех видов бактерий кишечной группы показывает, что в результате эксперимента выявляется достоверное воздействие ЭМ-сосудов на прирост бактерий. При действии на гетеротрофные бактерии в прудовой воде это некоторое снижение численности микроорганизмов, начиная со второго дня опыта. В искусственно приготовленной смеси бактерий, состоящей из кишечной полочки, сальмонелл и стрептококков фекалис, отмечается общая закономерность прироста численности бактерий - неравномерный, колебательный прирост в контроле, и стабильный прирост всех трех видов бактерий в сосудах из ЭМ-пластмассы.

Проведенные исследования, особенно с бактериями кишечной группы, показывают, что колебательные процессы прироста бактерий в контрольных сосудах, могут иногда быть приняты как подавление численности бактерий по сравнению с опытными сосудами. На самом же деле стабилизация прироста численности бактерий в опытных сосудах на следующие сутки может дать результаты одинаковые как в контроле, так и в опыте. Такое явление можно выявить только при изучении изменения динамики численности бактерий в течение 4 или 7 дней, а не отдельными измерениями численности бактерий в контрольных и опытных сосудах. Нами действительно отмечено подавление развития микрофлоры в ЭМ-пластиковых сосудах, но этот процесс не столь значителен, так как в воде еще остаются десятки тысяч сапрофитных бактерий.

 2. Доказательство путем гемосканирования безвредности или полезности для людей воды из ЭМ-пластиковых емкостей

 2.1. Задачи исследования и методика проведения экспериментов

   В настоящее время скрининговый анализ крови (гемосканирование) широко используется в диагностике, и дает возможность следить за обменными процессами в организме. Данный анализ позволяет выявлять патологические изменения в различных органах под влиянием экзогенных и эндогенных факторов окружающей среды (Макарова и др., 2007).

Для проведения скринингового анализа крови мы использовали японский микроскоп «Nicon» с цифровой телекамерой. При проведении анализа, по капле живой крови, можно определить следующие параметры у человека, принимавшего воду из ЭМ-пластмассовых емкостей:

1. Изменение рН-крови по агглютинации эритроцитов. Эритроциты, при сдвиге рН-крови в кислую сторону, образуют так называемые «монетные столбики». В норме при рН - 7.4 эритроциты не образуют «монетных столбиков», либо они ограничены 2- 4 эритроцитами. Образование «монетных столбиков» отрицательное явление, так как резко сокращается рабочая поверхность эритроцитов и сердцу труднее осуществлять кровообращение, прогоняя агглютинировавшие эритроциты через капилляры. Под влиянием токсинов, выделяемых патогенными организмами, присутствующими в организме человека, или при попадании токсинов из-вне с пищей или водой, процессы склеивания эритроцитов возрастают и количество и длина «монетных столбиков» увеличивается. Наша задача была посмотреть, как влияет вода после экспозиции в ЭМ-сосудах из пластика на образование «монетных столбиков» из эритроцитов крови.

2. Скриниговый анализ позволяет следить за качеством эритроцитов и отмечать отклонения в их морфологии по появлению пойкилоцитов, эхиноцитов, а также выявлять белковое сцепление эритроцитов, как один из процессов, говорящих о нарушении метаболизма в организме. По этой причине в опытах с приемом воды из ЭМ-пластмассовых емкостей мы следили за динамикой изменения пойкилоциов и эхиноцитов в периферической крови человека и за наличием белкового сцепления.

3. При гемосканировании возможна оценка состояния иммунной системы испытуемого, в основу которой положено размерное соотношении е диаметра эритроцитов и лейкоцитов. В норме в диаметре лейкоцита укладывается примерно 2,5 диаметра эритроцита. При уменьшении этого соотношения можно говорить об ослаблении иммунной системы. Вторым признаком ослабления иммунной системы является совместное нахождение нескольких лейкоцитов в одной области микропрепарата (коллективная работа лейкоцитов). В задачу нашего исследования входило возможное установление эффекта повышения иммунной системы человека после приема воды из ЭМ-пластиковых сосудов.

4. О нагрузке на печень можно судить по наличию в плазме крови фибриногеновых нитей. Использование темнопольной и фазово-контрастной микроскопии позволяет выявлять эти нити в том случае, если печень работает с повышенной нагрузкой. В нашем анализе мы следили за образованием фибриногеновых нитей в препаратах капли крови до приема воды из ЭМ-емкостей и после приема активированной воды.

5. В процессе гемосканирования в плазме крови при нарушении обменных процессов можно выявить кристаллоиды холестерина, ортофосфорной и мочевой кислоты. В нашу задачу входило также исследование посмотреть, как влияет активированная вода на процесс образования указанных кристаллоидов в плазме крови. В случае растворения указанных образований мы можем говорить о наличии у воды высокой метаболитической активности после ее экспонирования в сосудах из ЭМ -пластика.

6. Скриниговый анализ периферической крови позволяет также выявить наличие сапрофитной и патогенной микрофлоры и микрофауны в плазме крови. Среди таких организмов встречаются бактерии, простейшие, споры грибов и личинки многоклеточных паразитов. Нам предстояло также установить как влияет активированная вода из ЭМ- пласмассовых емкостей на микрофлору и микрофауну сапрофитной микрофлоры и паразитарной микрофауны.

Для наших исследований мы использовали питьевую воду, которая находилась в ЭМ- пластмассовых емкостях в течение 40 минут и употреблялась 4 испытуемыми после экспозиции в указанных емкостях.

В качестве контроля выступали те же испытуемые, которые за 2 дня до постановки эксперимента с действием воды на кровь из ЭМ-пластмассовых емкостей принимали по 200 мл воды из 2 литровых из обычного полиэтилена.

Скрининговый анализ крови  проводился нами через 40 минут, через 48 часов и через 96 часов после того как участники эксперимента начали пить воду. Ежедневно, кроме первого дня эксперимента, каждый из участников опыта выпивал за сутки 1 литр воды. Испытуемые пили воду в течение 4-х суток и каждый раз у них через 40 минут после приема очередной порции  воды (по 200 мл) проводилось гемосканирование периферической крови взятой из пальца и микросъемка временных препаратов изготовленных из капли крови.

 2.2. Результаты исследований

 В эксперименте участвовали двое мужчин и две женщины в возрасте от 32 до 68 лет. Испытуемые были подобраны так, что в их крови при скрининговом анализе без использования воды из ЭМ-сосудов обнаруживались постоянно отклонения от нормы. В частности у всех участников эксперимента рН крови была меньше 7,4, что приводит к образованию длинных «монетных столбиков» из эритроцитов. У каждого испытуемого в крови найдены пойкилоциты, а у трех человек помимо этого еще и эхиноциты. У двух испытуемых в плазме крови отмечены кристаллоиды холестерина и мочевая кислота, а у трех участников найдена ортофосфорная кислота. Отклонения в крови испытуемых, выявленные до приема активированной воды, представлены в таблице 3.

Таблица 3

Отклонения в крови испытуемых до приема воды из ЭМ-емкостей

У всех испытуемых отмечено образование «монетных столбиков»

Обозначения: + встречаются; - отсутствие.

 Для сравнительной оценки действия активированной воды из ЭМ емкостей приведены микропрепараты живой крови испытуемых до приема воды из пластиковых ЭМ емкостей и после приема воды (рис. 1. 2).

 Рис. 1. Картина крови испытуемого 2 до приема активированной воды

Видны «монетные столбики», мишенеподобные эритроциты, лимфоцит и не агрегированные тромбоциты.Скрининговый анализ крови на представленном микропрепарате показывает, что кровь закислена.

 Рис 2. Микропрепарат крови испытуемого 2 после приема воды из ЭМ пластиковой емкости. «Монетные столбики» эритроцитов разошлись. Закисление крови снято.

      Первым приводится пример испытуемого 2, так как у него отмечены наименьшие изменения в крови до приема активированной воды из ЭМ емкостей. Основное отклонение сводится к образованию эритроцитами «монетных столбиков», которые указывают на сдвиг рН крови в сторону закисления. Это неблагоприятный фактор, при действии которого резко сокращается рабочая поверхность эритроцитов, а у человека с таким отклонением отмечается повышенная утомляемость и кислородная недостаточность при  повышении физической нагрузки.

Прием воды, активированной в ЭМ-емкостях, приводит в первый день к распаду «монетных столбиков». И к улучшению общего самочувствия испытуемого.

Однако тщательный анализ препарата показывает, что среди эритроцитов можно найти пойкилоциты и у эритроцитов не исчезают признаки белкового сцепления.

Исследования через 24 часа и через 48 часов показывают, что активированная вода влияет на агглютинацию эритроцитов. «Монетные столбики» эритроцитов в крови не образуются. Дальнейшие исследования помогли бы ответить на вопрос, как долго сохраняются положительные изменения в форменных элементах крови после приема воды из ЭМ пластмассовых емкостей. Для этого необходимы более продолжительные эксперименты с чередующимися периодами приема активированной воды при ее различном времени экспозиции в ЭМ пластиковых сосудах.

Испытуемый 1 - эритроциты сильно изменены (рис.№3)

 Рис.3. Картина крови у испытуемого 1 до приема активированной воды в ЭМ-пластиковых сосудах (видно большое количество эхиноцитов).

 Рис. 4. Микропрепарат живой крови после приема активированной воды испытуемым 1.

       Через 40 минут после приема активированной воды из ЭМ-сосудов произошло изменение форменных элементов крови (Рис. 4).

Как видно из Рис. 4 под влиянием воды, содержащейся в ЭМ пластиковых емкостях происходит исчезновение пойкилоцитов и особенно эхиноцитов, присутствие которых вызвано, скорее всего, заболеванием щитовидной железы у испытуемой женщины.

Дальнейший прием воды из ЭМ пластиковых сосудов в течение 4-х суток показал, что эхиноциты у испытуемой в крови не появились.

Однако «монетные столбики сохранились, так как процесс закисления крови зашел уже далеко. Окончательно судить о стабильности этого состояния можно только после проведения хронических экспериментов.

Картина крови 3-го испытуемого до приема активированной воды и после приема представлена на Рис. 5 и Рис. 6.

 Рис. 5. Микропрепарат живой крови испытуемого 3. Отмечается наличие пойкилоцитов и эхиноцитов.

      До приема активированной воды видно наличие дискоцитов и эхиноцитов. В крови также отмечается некоторое количество «монетных столбиков» из эритроцитов. После приема воды из ЭМ-емкостей «монетные столбики» разошлись, как и у испытуемого 2, а эхиноциты прошли обратное изменение и стали нормальными эритроцитами.

Указанные преобразования форменных элементов крови испытуемого представлены на Рис. 6.

 Рис. 6. Кровь испытуемого 3 после приема активированной воды приблизилась к норме, с хорошими показателями.

         Положительным явилось также то, что вода из ЭМ-емкостей способствует уменьшению агрегации тромбоцитов.

Картина крови 4-го испытуемого до приема активированной воды представлена на рис. 7.

 Рис. 7. Микроперпарат крови 4-го испытуемого до приема активированной воды из ЭМ-емкостей.

   На препарате (рис. 7) можно отметить: пойкилоциты, дискоциты и эхиноциты. Помимо этого виден кристаллоид мочевой кислоты. По «монетным столбикам», образованным эритроцитами, можно судить о закислении крови.

На рис. 8. приведена картина крови после приема 200 мл воды из ЭМ-пластмассовых емкостей.

 а

 б

Рис. 8. Картина крови испытуемого 4 после приема воды из ЭМ-емкостей (а и б). б-фото приведено, чтобы показать, что мочевая кислота сохраняется даже после приема воды (кристаллы внизу снимка б).

    Употребление воды из ЭМ-пластиковых ескостей приводит к обратному развитию дискоцитов, пойкилоцитов и эхиноцитов уже через 40 минут. Однако соли мочевой кислоты сохраняются в плазме крови, что указывает на более устойчивый характер этого изменения. Сохраняются и «монетные столбики» эритроцитов.

Употребление активированной воды в течение 4 суток показывает, что в крови испытуемого не выявляются эхиноциты и пойкилоциты. Однако окончательно об эффекте этих изменений можно будет судить после хронического эксперимента и прекращения приема воды из ЭМ-пластиковых емкостей, хотя бы в течение 10 -15 дней.

Анализ результатов всех проведенных исследований говорит о том, что под влиянием воды из ЭМ-пластмассовых емкостей в крови исчезают пойкилоциты, дискоциты и эхиноциты уже через 40 минут после приема жидкости. Однако закисление крови и распад «монетных столбиков» на отдельные эритроциты, происходит только у тех испытуемых, у которых в крови было найдено меньше эхиноцитов и пойкилоцитов. Видимо, у этих людей кровь менее закислена уже с самого начала эксперимента. Что же касается присутствия в плазме крови отдельных гранул ортофосфорной кислоты и более крупных кристаллов мочевой кислоты, то они сохраняются после приема активированной воды из ЭМ-пластиковых емкостей в остром опыте. Окончательный ответ о воздействии активированной воды на образование солей и кристаллоидов холестерина в плазме крови могут дать только хронические опыты, которые необходимо провести в ближайшем будущем.

Разницы по действию активированной воды из ЭМ-пластиковых емкостей на формирование «монетных столбиков» эритроцитами, на образование пойкилоцитов и эхиноцитов у мужчин и женщин не обнаружено.

Употребление воды из контрольных сосудов не вызывает изменения форменных элементов крови и не влияет на агрегацию эритроцитов.

 2.3. Заключение

Проведенные исследования показывают, что вода, помещенная в ЭМ-пластмассовые емкости, активируется уже через 40 минут и положительно влияет на качественный состав крови человека, потребляющего воду из экспериментальных сосудов. Под влиянием выпитой воды уже через 40 минут у человека могут исчезать «монетные столбики» эритроцитов, а дискоциты, эхиноциты и пойкилоциты трасформируются в нормальные эритроциты. При постоянном употреблении воды в течение 4-х суток все перечисленные виды трансформации форменных элементов крови сохраняются. Все это говорит о пользе употребления воды из ЭМ-пластмассовых емкостей.

Однако в остром опыте длительностью не более 96 часов нам не удалось отметить эффекта рассасывания кристаллоидов холестерина, мочевой и ортофосфорной кислоты в плазме крови испытуемых. Возможно, в хроническом опыте будут получены положительные результаты, но для этого нужно проведение эксперимента в течение, хотя бы 30 суток. Желательно также установить длительность последействия воды из ЭМ-пластмассовых емкостей, после прекращения ее приема испытуемыми.

Литература

1. Платонов А.Е. Статистический анализ в медицине и биологии М.: РАМН 2001. -51 с..

2. Макарова Г.А.. Муравьев С.А., Суплотов С.Н. Гемосканирование. Как ориентировочный метод оценки процессов аутолиза крови. Клиническая лабораторная диагностика, №9, 2007. С.79 - 80.

3. Микробиология загрязненных вод. (Под редакцией Р.Митчела). М. Медицина. 1976. х-320 с.

4. Шлегель Г. Общая микробиология. М.: Мир,1972. - 476 с

5. Попова Э.К. Техническая микробиология. МГТА.1981.- 72 с.

6. Симаков Ю.Г. Учет генных мутаций на Salmonella typhimurium. Методические указания по установлению эколого-рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ). М.: ВНИРО. 1998, С.91-102.